第十六次免疫组化质控活动存在的问题分析

单位编号: 1
得分:BCL-6(6分)、CD10(9.5分)、MUM-1(6分)
问题:BCL-6、 MUM-1无信号;CD10染色太弱。
原因:从提供的检测流程中难以找到问题所在;推测可能与抗原修复不充分或染色过程中,组织干片有关。
建议:修复过程中,需保证修复液没过组织切片;适当延长修复时间或新配修复液体;染色过程中,需避免组织干片。

单位编号:2
得分:BCL-2(5分)、MUM-1(6分)
问题:BCL-2染色切片呈现生发中心细胞核着色;MUM-1染色太弱。
原因:BCL-2染色切片可能用错了抗体,很可能是染了两张BCL-6。MUM-1染色太弱从方法中看不出明显问题,因此不能排除操作过程中的细微偏差致使最后染色不佳。
建议:仔细核对抗体,严格按照操作规程工作。

单位编号:5
得分: MUM-1(9分)
问题: MUM-1染色太弱。
原因:可能因机器染色条件未达到最佳状态有关。
建议:找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。

单位编号:6
得分:BCL-6(10.5分)
问题:BCL-6染色弱,苏木素对比不清楚。
原因:推测可能机器操作的一抗孵育时间太短20分钟(20℃)。
建议:找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。

单位编号:12
得分:BCL-6(10.5分)
问题:BCL-6染色太弱,有红细胞着色,且有非特异性着色。
原因:对于BCL-6来说,一抗与二抗试剂公司不同,可能会影响染色结果。也不能排除操作过程中的细微偏差影响了染色结果。未彻底处理掉过氧化物酶。
建议:尽量使用同一公司试剂;染色过程中尽量做到细致;最好修复前用过氧化氢处理红细胞内的过氧化物酶。

单位编号:17
得分: MUM-1(7分)
问题:无信号。
原因:可能抗体失效,或染色过程遗漏,或不同公司的二抗与显色试剂不匹配。
建议:检查一抗是否失效,严格按照操作步骤进行染色,尽量使用同一公司试剂。

单位编号:28
得分:BCL-2(12分)、CD10(10分)
问题:BCL-2染色弱,苏木素复染太深; CD10染色太弱。
原因:推测可能与二抗孵育时间太短15分钟有关;CD10染色过程中使用了不同公司试剂可能会影响染色结果。
建议:二抗孵育时间可以延长至20分钟,染色过程中避免组织干片,尽量使用同一公司试剂,苏木素复染时间适当缩短或分化时间延长。

单位编号:31
得分:BCL-2(12分)
问题:BCL-2偏弱。
原因:推测可能与显色时间不足有关(1分钟)。
建议:适当延长显色时间(在显微镜下控制显色时间)。染色强度应该达到扁桃体上皮内T细胞清晰着色(即在低倍镜下能看清楚;这是国际标准)。

单位编号:32
得分:BCL-2(10分)、BCL-6(10.5分)、CD10(7.5分)
问题:BCL-2和CD10染色弱,有非特异性着色,影响判读;BCL-6染色弱。
原因:推测可能采用SP检测方法有关,染色过程应封闭内源性生物素,孵育时间可以适当延长。
建议:对于检测细胞核的试剂,建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。最好使用二步法进行检测,可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。更换封闭内源性生物素的液体;孵育时间调整为夏日50分钟,冬日1小时。

单位编号:37
得分:BCL-6(11分)、CD10(8.5分)
问题:BCL-6和CD10染色弱。
原因:从提供的检测流程中,染色过程中使用了不同公司试剂可能影响染色结果。
建议:尽量使用同一公司试剂;对于检测细胞核的试剂,建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。最好使用二步法进行检测,可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。染色过程中,尤其在滴加试剂时,一定要将组织上的水分甩干,以免影响抗体浓度。

单位编号:38
得分:BCL-2(8.5分)、CD10(12分)
问题:BCL-2染色弱;CD10染色太弱,影响判断。
原因:可能与机器调试有关;BCL-2稀释浓度可能偏低,需调整。
建议:找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。

单位编号:43
得分:BCL-2(9分)
问题:BCL-2非特异性着色,无法判断。
原因::推测可能采用SP检测方法有关,染色过程应封闭内源性生物素。
建议:建议最好使用二步法进行检测,可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。更换封闭内源性生物素的液体,调整BCL-2抗体浓度,可以适当稀释。

单位编号:47
得分:BCL-6(10分)、CD10(6.5分)
问题:BCL-6和CD10染色弱,无法读取。
原因:从提供的检测流程中,推测可能与抗原修复有关。
建议:对于检测细胞核的试剂,建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。染色过程中,尤其在滴加试剂时,一定要将组织上的水分甩干,以免影响抗体浓度。

单位编号:49
得分: CD10(11.5分)、MUM-1(8分)
问题: CD10和MUM-1染色弱。
原因:从提供的检测流程中,推测染色过程中使用了不同公司试剂可能会影响染色结果。
建议:尽量使用同一公司试剂;染色过程中,尤其在滴加试剂时,一定要将组织上的水分甩干,以免影响抗体浓度。

单位编号:52
得分: BCL-2(9分)、CD10(8分)
问题: BCL-2和CD10染色太弱。
原因:从提供的检测流程中,推测染色过程中二抗孵育时间过短以及抗原修复不足有关。
建议:高压修复时间适当调整,应为喷气后2分钟左右。适当延长二抗孵育时间,新抗体在使用前先用阳性对照进行测试,找到最佳染色浓度。

单位编号:53
得分: MUM-1(11分)
问题: 苏木素复染太深,染色对比差。评委只给了11分,很遗憾!
原因:可能与复染过程中,染色时间太长、流水冲洗不不够或分化不够有关。
建议:缩短复染时间,或延长分化时间。

单位编号:54
得分: BCL-6(12分)、CD10(7.5分)、MUM-1(10.5分)
问题: BCL-6和MUM-1染色太弱;CD10检测扁桃体组织生发中心细胞几乎无阳性。
原因:从提供的检测流程中,推测可能与一抗(40分钟)和二抗孵育时间(10分钟)过短有关。
建议:适当延长一抗孵育时间,调整为夏日50分钟,冬日1小时。二抗孵育时间也可以适当延长,可先用阳性对照进行测试,找到最佳孵育时间。

单位编号:55
得分: CD10(9分)
问题:检测扁桃体组织生发中心细胞几乎无阳性。
原因:从提供的检测流程中,未能找到影响因素,可能与抗体克隆号不同或操作过程中组织未能充分与试剂反应有关。
建议:用扁桃体组织作为阳性对照进行测试,找到最佳克隆号的试剂以及染色操作技巧,及时更换修复液体,染色过程中避免组织干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:57
得分: BCL-2(9.5分)
问题: BCL-2染色弱,有非特异性着色。
原因:从提供的检测流程中,推测可能与一抗浓度过高有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳抗体浓度;染色过程中,每次漂洗过程一定要清洗干净,复染时需要用流水漂洗彻底。

单位编号:58
得分: CD10(12分)
问题:CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色弱。
原因:不同公司试剂或许不匹配,也可与能机器操作条件未达到最佳状态等有关。
建议:尽量使用同一个试剂公司的试剂。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。

单位编号:59
得分: BCL-2(6分)、BCL-6(12.5分)、CD10(11.5分)
问题: BCL-2几乎无阳性信号;BCL-6和CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号不强。
原因:可与能机器操作条件未达到最佳状态等有关。
建议:找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。

单位编号:68
得分: BCL-2(11分)
问题: BCL-2染色信号不强。
原因:从提供的染色程序中并无明显异常,推测可能一抗浓度不足有关。
建议:染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:69
得分: MUM-1(11.5分)
问题: 染色不够强。
原因:推测可能与使用不同公司试剂、机器操作等有关。
建议:适当延长一抗孵育时间,调整机器检测程序,找到最佳染色程序,并尽量使用同一试剂公司试剂。

单位编号:72
得分: CD10(10.5分)
问题: CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号不强。
原因:推测可能与使用不同公司试剂有关。
建议:尽量使用同一试剂公司试剂;染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:73
得分: BCL-2(10.5分)、BCL-6(12分)、MUM-1(8分)
问题: BCL-2染色弱,对比差;BCL-6染色弱;MUM-1染色太弱,影响判断。
原因:推测可能抗原修复不足有关。
建议:建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复,尤其是一些核着色的抗体。染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:74
得分: BCL-2(10分)、CD10(7.5分)
问题: BCL-2染色弱,对比差; CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号太弱。
原因:推测可能一抗孵育时间太短40分钟等有关。另外,BCL-2染色使用了不同公司试剂,或许不能完全匹配。
建议:适当延长一抗孵育时间,调整为夏日50分钟,冬日1小时。并尽量使用同一试剂公司试剂。染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:75
得分: MUM-1(8分)
问题:染色信号不强,复染太深。
原因:推测可能机器操作程序设置时,复染程度时间过长有关。
建议:调整机器检测程序,缩短复染时间。

单位编号:76
得分: BCL-2(10.5分)、BCL-6(11.5分)、CD10(10.5分)
问题: BCL-2染色弱,对比差;BCL-6和CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。
原因:可能与一抗孵育时间太短30分钟(20℃),或采用SP检测方法有关。
建议:孵育时间调整为夏日50分钟,冬日1小时。对于检测细胞核的试剂,建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。最好使用二步法进行检测,可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:79
得分: CD10(5分)
问题: CD10着色模式异常,鳞状上皮基底细胞及血管内皮细胞的核着色。
原因:可能试剂被污染、抗体用错或操作不当有关。
建议:再次用阳性切片进行试剂检测,如再次出现异常,建议更换试剂。

单位编号:80
得分: CD10(12分)
问题: CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。
原因:推测可能机器操作程序设置未达最佳状态有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。

单位编号:81
得分: BCL-2(12分)、BCL-6(10.5分)、CD10(12分)
问题: BCL-2染色弱,有非特异性着色;BCL-6和CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。
原因:BCL-2可能与试剂浓度过高有关;BCL-6和CD10可能与抗原修复不充分有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳抗体浓度;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:84
得分: BCL-2(8分)
问题: BCL-2非特异性着色。
原因:BCL-2可能与试剂浓度过高有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳抗体浓度;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:85
得分: BCL-2(11分)、BCL-6(12分)
问题: BCL-2染色弱,有非特异性着色;BCL-6检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。
原因:BCL-2可能与试剂浓度过高有关;BCL-6可能与抗原修复不充分有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳抗体浓度;对于检测细胞核的试剂,建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。二抗孵育时间可以尝试缩短至15-20分钟。

单位编号:87
得分: BCL-2(8.5分)、BCL-6(7分)、CD10(7.5分)、MUM-1(7分)
问题: BCL-2染色弱;BCL-6、MUM-1无阳性信号;CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。
原因:可能与抗原修复不足、以及抗体孵育时间不充分有关(18-30度,变化范围太大)。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色程序;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。孵育时间调整为夏日50分钟,冬日1小时。

单位编号:88
得分: BCL-2(9.5分)、BCL-6(10分)、CD10(8.5分)
问题: BCL-2染色弱;BCL-6检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号不强;CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。
原因:操作细节不详细,可能与机器染色,程序调制有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。

单位编号:89
得分: BCL-6(10分)
问题: BCL-6检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。
原因:可能与一抗孵育时间过短有关(15分钟)以及机器染色调制有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。

单位编号:91
得分: BCL-2(11分)、BCL-6(7.5分)
问题: BCL-2染色弱,有非特异性着色;BCL-6无阳性信号。
原因:BCL-2可能与抗体浓度过高,机器调试不当有关;BCL-6可能与抗原修复不足有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。

单位编号:93
得分: BCL-2(11.5分)
问题: BCL-2染色对比差,有非特异性着色。
原因:可能与抗体浓度过高,显色时间过长有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色浓度;DAB显色时,在显微镜下调整显色时间,以免过染。

单位编号:94
得分: BCL-2(12分)
问题: BCL-2染色强度不足。
原因:提供的检测条件中,温度在18-30度,变化范围太大,无法进行分析。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色程序;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。孵育时间调整为夏日50分钟,冬日1小时,温度以27-28最佳。

单位编号:95
得分: BCL-6(8.5分)
问题: BCL-6检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱,复染不清。
原因:推测可能与采用SP检测方法有关。
建议:最好使用二步法进行检测,可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。复染时,注意漂洗干净。

单位编号:96
得分: BCL-2(8分)、BCL-6(10分)、CD10(7.5分)、MUM-1(6分)
问题: BCL-2染色过染,有非特异性着色;BCL-6、MUM-1、CD10有非特异性着色,无阳性信号。
原因:虽然从填写的注册表中未发现明显问题,但是4张切片染色均不好,很可能可能与抗原修复不足有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色浓度;修复液应及时更换,保证修复液沸腾后维持20分钟,同时染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。也可采用高压修复,应为喷气后2分钟左右。或微波炉,先用高档3分钟烧开,再换成低档维持15-20分钟。

单位编号:98
得分: BCL-6(8.5分)、CD10(8.5分)
问题: BCL-6检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。
原因:从提供的染色方法中没有找到原因,推测可能与抗原修复不足等有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色程序;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:100
得分: BCL-2(8分)、BCL-6(7.5分)、CD10(6分)、MUM-1(6分)
问题: 染色弱,大部分区域无阳性信号。
原因:从提供的染色方法中没有找到原因,推测可能与抗原修复不足等有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色程序;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干;高压修复时间适当调整,应为喷气后2分钟左右。或微波炉,先用高档3分钟烧开,再换成低档维持15-20分钟。

单位编号:102
得分: BCL-2(9.5分)
问题:染色过染,有非特异性着色。
原因:从提供的染色方法中没有找到原因,推测可能与抗原修复不足等有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色浓度;DAB显色时,在显微镜下调整显色时间,以免过染。

单位编号:103
得分: BCL-2(10分)
问题: 染色对比差,有非特异性着色。
原因:从提供的染色方法中没有找到原因,推测可能与抗体浓度等有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色浓度;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干;DAB显色时,在显微镜下调整显色时间,以免过染。

单位编号:106
得分: BCL-2(9分)、BCL-6(9.5分)、CD10(11.5分)、MUM-1(11.5分)
问题: BCL-2、MUM-1染色弱;BCL-6、CD10染色太弱,无法判断。
原因:可能与一抗孵育时间过短有关(28分钟),使用不同公司试剂以及机器染色调试有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。

单位编号:108
得分: BCL-2(7分)、MUM-1(11.5分)
问题: BCL-2染色弱;MUM-1染色偏弱。
原因:可能与机器染色,程序调试有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号:109
得分: CD10(10.5分)、MUM-1(10分)
问题: BCL-6、CD10染色弱。
原因:可能与机器染色,程序调试有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号:112
得分: BCL-2(10.5分)
问题:染色对比差,有非特异性着色。
原因:从提供的染色方法中没有找到原因,推测可能与抗体浓度等有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色浓度;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干;DAB显色时,在显微镜下调整显色时间,以免过染。

单位编号:115
得分: BCL-6(10.5分)
问题: BCL-6染色弱,对比差,肝脏有非特异性着色。
原因:可能与二抗孵育时间过短有关(20分钟)。
建议:适当延长二抗孵育时间,修复液应及时更换,染色过程中避免干片。

单位编号:116
得分: BCL-6(8.5分)
问题: BCL-6染色弱,DAB液体有沉淀在切片上。
原因:可能与二抗孵育时间过短有关(10分钟)。
建议:适当延长二抗孵育时间,修复液应及时更换,染色过程中避免干片。

单位编号:117
得分: BCL-2(11.5分)、CD10(7分)、MUM-1(8.5分)
问题: BCL-2、MUM-1染色弱; CD10染色太弱,无法判断。
原因:可能与机器染色,程序调试有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号:118
得分: BCL-6(12分)
问题: BCL-6染色弱。
原因:可能与机器染色调试有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。

单位编号:119
得分: BCL-2(6分)、MUM-1(8分)
问题: BCL-2无阳性信号;MUM-1染色弱。
原因:可能与使用不同公司试剂以及机器染色程序不佳等有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号:121
得分: BCL-6(7分)、CD10(12分)
问题: BCL-6无阳性信号;CD10染色偏弱。
原因:从提供的染色方法中没有找到原因,推测可能与抗体浓度等有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色浓度;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干;操作过程中,保证每一个步骤都准确。

单位编号:123
得分: BCL-6(11.5分)
问题: BCL-6染色弱。
原因:可能与使用不同公司试剂以及机器染色调试有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号:124
得分: CD10(9.5分)
问题: CD10检测扁桃体组织生发中心细胞染色信号弱。
原因:提供的检测方法不太详细,无法分析。
建议:用阳性对照切片,调整检测方法。修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干;一抗孵育时间调整为夏日50分钟,冬日1小时。

单位编号:125
得分: CD10(7分)、MUM-1(11分)
问题: CD10染色太弱,无法判断;BCL-6染色偏弱。
原因:染色可能与修复不充分有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳检测方法;对于检测细胞核的试剂,建议采用碱性修复液EDTA pH8.0或EGTA pH9.0进行修复。修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。尽量使用同一公司试剂。

单位编号:128
得分: BCL-2(6.5分)、BCL-6(12分)
问题: BCL-2染色黄,非特异性着色;BCL-6染色弱。
原因:从提供的染色方法中没有找到原因,推测可能与抗体浓度等有关。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色浓度;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干;DAB显色时,在显微镜下调整显色时间,以免过染。

单位编号:132
得分: BCL-2(8分)、BCL-6(8.5分)、CD10(11.5分)、MUM-1(10.5分)
问题: BCL-2几乎无阳性信号;BCL-6、CD10、MUM-1染色弱。
原因:可能抗原修复不充分,以及使用SP检测方法,敏感性不足有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整染色程序。高压修复时间适当调整,应为喷气后2分钟左右。或微波炉,先用高档3分钟烧开,再换成低档维持15-20分钟。修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干;最好使用二步法进行检测,可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。

单位编号:134
得分: BCL-2(6分)、BCL-6(7分)、CD10(7分)、MUM-1(7分)
问题:染色太弱,无法判断。
原因:所有检测抗体染色都不理想,可能与操作程序不当有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整染色程序。高压修复时间适当调整,应为喷气后2分钟左右。或微波炉,先用高档3分钟烧开,再换成低档维持15-20分钟。修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干;最好使用二步法进行检测,可以尝试采用EnVision、MaxVision等检测方法。

单位编号:136
得分: CD10(11分)、MUM-1(12分)
问题:染色弱。
原因:可能与使用不同公司试剂以及机器染色调试有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号:137
得分: BCL-2(11.5分)
问题: BCL-2染色弱。
原因:可能与使用不同公司试剂以及机器染色调制有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号:140
得分: BCL-6(10分)
问题: BCL-6染色弱。
原因:可能与一抗孵育时间过短有关(30分钟)。
建议:用阳性对照切片,进行调整检测程序。一抗孵育时间调整为1小时。尽量使用同一公司试剂。

单位编号:142
得分: BCL-2(12分)
问题: BCL-2染色弱。
原因:从提供的染色方法中没有找到原因。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色程序;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:143
得分: BCL-2(9.5分)、BCL-6(6分)、MUM-1(7分)
问题: BCL-2染色弱;BCL-6、MUM-1染色太弱,无法判断。
原因:可能与一抗孵育时间过短有关(30分钟)。
建议:用阳性对照切片,进行调整检测程序。一抗孵育时间调整为1小时;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:146
得分: BCL-2(11分)
问题:染色弱,不清晰。
原因:从提供的染色方法中没有找到原因。
建议:先用阳性对照进行测试,找到最佳染色程序;修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干。

单位编号:148
得分: BCL-2(7.5分)、MUM-1(10分)
问题:BCL-2染色太弱,无法判断;MUM-1染色弱。
原因:可能与使用不同公司试剂以及机器染色调制有关。
建议:用阳性对照切片,进行调整机器检测程序。找工程师将机器调试到最佳染色状态,并应定期实行监测。尽量使用同一公司试剂。

单位编号:149
得分: BCL-2(10.5分)、BCL-6(12分)
问题:染色弱。
原因:提供的检测方法不太详细,无法分析。
建议:用阳性对照切片,调整检测方法。修复液应及时更换,染色过程中避免干片,滴加试剂时尽量将玻片上的水分甩干;一抗孵育时间调整为夏日50分钟,冬日1小时。高压修复时间适当调整,应为喷气后2分钟左右。或微波炉,先用高档3分钟烧开,再换成低档维持15-20分钟。

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